ВЛИЯНИЕ КОРМОВОЙ ДОБАВКИ НА ОСНОВЕ ЗЕРНОВОГО МИЦЕЛИЯ ВЕШЕНКИ ОБЫКНОВЕННОЙ
(PLEUROTUS OSTREATUS) НА ОКИСЛИТЕЛЬНЫЕ ПРОЦЕССЫ И АКТИВНОСТЬ АНТИОКСИДАНТНЫХ ФЕРМЕНТОВ В ПЛАЗМЕ КРОВИ КРОЛИКА ЕВРОПЕЙСКОГО (ORYCTOLAGUS CUNICULUS) 

Тарасов Сергей Сергеевич, ассистент, кафедра ботаники, физиологии и защиты растений, Нижегородская государственная сельскохозяйственная академия (Россия, г. Нижний Новгород, пр. Гагарина, 97), Tarasov_ss@mail.ru

591.13:636.92+577.11

10.21685/2307-9150-2017-1-3

Актуальность и цели. Рассматривается возможность влияния зернового мицелия вешенки обыкновенной (Pleurotus ostreatus) на процессы окислительной модификации белков (ОМБ), перекисное окисление липидов (ПОЛ), а также на активность антиоксидантных ферментов каталазы и супероксиддисмутазы (СОД) в плазме крови кролика европейского (Oryctolagus cuniculus). Целью  исследования являлось изучение возможности влияния зернового мицелия вешенки обыкновенной на процессы окислительной деструкции биополимеров и активности антиоксидантных ферментов.
Материалы и методы. Мицелий вешенки поступал в организм животных путем его скармливания в составе корма. ОМБ определялась путем регистрации продуктов – 2,4-динитрофенилгидразонов в плазме крови, ПОЛ при регистрации малонового диальдегида (МДА) и диеновых конъюгатов (ДК), определение СОД проводили методом, основанным на ее способности конкурировать с нитросиним тетрозолием за супероксидные анион-радикалы, регистрация каталазы осуществлялась за счет снижения количества пероксида в пробе.
Результаты. Выявлено влияние зернового мицелия вешенки обыкновенной на ОМБ, ПОЛ, активность СОД и каталазы. Зафиксировано снижение продуктов ОМБ в течение исследуемого периода, при этом можно выделить два пика снижения: краткосрочный в течение первых трех суток – незначительное изменение 2,4-денитрофенилгидразонов, долгосрочное – зафиксированный после семи суток с момента смены рациона. Схожая картина наблюдается и с ПОЛ. СОД увеличивает свою активность в первые сутки эксперимента с последующим снижением. Активность каталазы изменяется незначительно.
Выводы. Показана зависимость между уровнем ОМБ, ПОЛ и активностью соответствующих ферментов и количеством съеденного мицелия в сторону уменьшения концентрации продуктов ОМБ, ПОЛ и активности ферментов.

зерновой мицелий, окислительная модификация белков (ОМБ), перекисное окисление липидов (ПОЛ), динитрофенилгидразоны, малоновый диальдегид, диеновые конъюгаты, супероксиддисмутаза, каталаза

 Скачать статью в формате PDF

1. Тарасов, С. С. Влияние разных типов питания на степень окислительной модификации белков плазмы крови кролика (Oryctolagus cuniculus) / С. С. Тарасов // Молодой ученый. – 2011. – Т. 1, № 12. – С. 116–120.
2. Дубинина, Е. Е. Продукты метаболизма кислорода в функциональной активности клеток / Е. Е. Дубинина. – СПб. : Медицинская пресса, 2006. – 396 с.
3. Bergendi, L. Chemistry, physiology and pathology of free radicals / L. Bergendi, L. Benes, Z. Duraskova, M. Ferensik // Life sci. – 1999. – Vol. 65, № 18/19. – P. 810–817.
4. Frey, P. A. Radical mechanisms of enzymatic catalysis / P. A. Frey // Anny. Rev. Biochem. – 2001. – Vol. 70. – P. 121–148.
5. Стальная, И. Д. Метод определения малонового диальдегида / И. Д. Стальная, Т. Г. Гаришвили // Современные методы в биохимии / под ред. В. Н. Ореховича. – М. : Медицина, 1997. – C. 66–68.
6. Каган, В. Е. Проблемы анализа эндогенных продуктов перекисного окисления липидов / В. Е. Каган, О. Н. Орлова, Л. Л. Прилипко – М. : Изд-во ВИНИТИ АН СССР, 1986. – 136 с.
7. Patterson, B. D. An inhibitor of catalase induced by cold in chilling-sensitive plants / B. D. Patterson, L. A. Paune, Chen Yi-Zhu, P. Graham // Plant Physiology. – 1984. – Vol. 76, № 4. – P. 1014–1018.
8. Дубинина, Е. Е. Окислительная модификация белков сыворотки крови человека, метод ее определения / Е. Е. Дубинина, С. О. Бурмистров, Д. А. Ходов, И. Г. Поротов // Вопросы медицинской химии. – 1995. – Т. 41, вып. 1. – С. 24, 25.
9. Мельников, В. В. Лабораторные методы исследования в клинике / В. В. Мельников. – М. : Медицина, 1987. – 367 с.
10. Гланц, С. Медико-биологическая статистика / С. Гланц. – М. : Практика, 1999. – 459 с.
11. Морозов, А. И. Грибы: руководство по разведению / А. И. Морозов. – Донецк :Сталкер,2000. – 304с.
12. Иванов, А. И. Грибоводство / А. И. Иванов. – Пенза : РИО ПГСХА, 2015. – 96 с.
13. Петрова, М. Д. Открытие нейтрофильных внеклеточных ловушек – новый этап в изучении морфогенеза и функций нейтрофилов / М. Д. Петрова, М. Г. Шубин // Морфология. – 2011. – Т. 139, № 3. – С. 89–96.
14. Ванько, Л. В. Оксидативный стресс в генезе акушерских осложнений / Л. В. Ванько, В. Г. Сафронова, Н. К. Матвеева, Г. Т. Сухих. – М. : ГЭОТАР-Медиа, 2010. – 264 с. 15. Alghamdi, A. S. Seminal DNase frees spermatozoa entangled in neutrophil extracellular traps / A. S. Alghamdi, D. N. Foster // Biol. Reprod. – 2005. – Vol. 73. – P. 1174–1181.